ESPECTRO LUMINOSO E BAP NA INDUÇÃO DE PLBs A PARTIR DE CALOS DE Cattleya nobilior Rchb.f. (ORCHIDACEAE)

Autores

  • J. C. M. Ramos
  • A. Goelzer
  • C. R. Damiani

DOI:

https://doi.org/10.18011/bioeng2020v14n4p402-411

Palavras-chave:

Orquídea, Citocinina, Protocormos

Resumo

Este estudo foi desenvolvido com o objetivo de avaliar o efeito de 6-benzilaminopurina - BAP (0; 0,5 e 1,0 mg L-1) e espectros luminosos (branco, vermelho e azul), na indução de estruturas semelhantes à protocormos ("protocorm like bodies - PLBs") a partir de calos obtidos de explantes foliares. O delineamento experimental utilizado foi inteiramente casualizado e os tratamentos foram arranjados em esquema fatorial 3x3 (três concentrações de BAP e três espectros luminosos), com quatro repetições (frasco) contendo cinco explantes cada. Aos 60 dias de cultivo foram avaliados o número e o comprimento dos protocormos, número de folhas por protocormo, massa fresca total, percentual de explantes oxidados e coloração dos explantes, sendo nesta última, atribuídos os seguintes valores: 1 – branco/amarelado, 2 – verde claro e 3 - verde escuro. A partir dos resultados obtidos foi possível concluir que o cultivo dos calos de Cattleya nobilior em meio MS suplementado com 1,0 mg L-1 de BAP e sob espectro luminoso vermelho promove um aumento da massa fresca e diminui a oxidação dos protocormos,enquanto que, o cultivo em meio contendo 0,5 mg L-1 de BAP e sob espectro luminoso branco promove um leve aumento no comprimento dos protocormos. No entanto, para o número de protocormos, número de folhas por protocormo e coloração dos protocormos, os tratamentos realizados não promoveram alterações significativas sobre estas variáveis.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

ARAÚJO, A.G.; PASQUAL, M.; RODRIGUES, F. A.; RODRIGUES, J. D.; CASTRO, E. M. de; SANTOS, A. M. Crescimento in vitro de Cattleya loddigesii Lindl. em diferentes espectros luminosos associados com ácido giberélico. Ceres, v.56(5): 542-546, 2009.

ARAÚJO, R. Orquídeas brasileiras. São Paulo: Editora Europa, 2016.

BARROS, F.; VINHOS, F.; RODRIGUES, V. T.; BARBERENA, F. F. V. A.; FRAGA, C. N.; PESSOA, E. M.; FORSTER, W.; MENINI NETO, L.; FURTADO, S. G.; NARDY, C.; AZEVEDO, C. O.; GUIMARÃES, L. R. S. Orchidaceae in Lista de Espécies da Flora do Brasil. 2019.

BARROS, F. D. E; Orchidaceae in Flora do Brasil 2020 (em construção). Jardim Botânico do Rio de Janeiro, 2020.

BENZING, D. H.; OTT, D. W.; FRIEDMAN, W. E. Roots of Sobralia macrantha (Orchidaceae): structure and function of the velamen-exodermis complex. American Journal of Botany, v. 1(69): 508-614, 1982.

CAMPOS, R. V.; BIANCHI, V. J.; ROCHA, P. S. G.; SCHUCH, M. W.; FACHINELLO, J. C. BAP na multiplicação in vitro de porta-enxertos de Prunus spp. Plant Cell Culture & Micropropagation, v. 3(2): 55-60, 2007.

CARDOSO, J. C. Publicação em cultivo in vitro de plantas: qualidade para o avanço científico e tecnológico. Horticultura Brasileira, v. 32(4): 383-384, 2014.

ENFLOR. Mercado brasileiro de flores e plantas ornamentais segue na contramão da crise. In: Encontro nacional de floristas, produtores, atacadistas e empresas de acessórios; Holambra, Release econômico; 2019.

ERIG, A. C.; SCHUCH, M. W. Ação da 6-benzilaminopurina e da qualidade da luz na multiplicação in vitro de macieira. Malus domestica Borkh. CVS. Galaxy e Master Gala. Revista Brasileira de Agrociência, v. 12(2), 151-155, 2006.

FARIA, R. T.; ASSIS, A. M.; UNEMOTO, L. K.; CARVALHO, J. F. R. P. Produção de orquídeas em laboratório, Londrina: Mecenas, 124p, 2012.

GALDIANO JÚNIOR, R. F.; MANTOVANI, C.; CASSANO, A. O.; LEMOS, E. M. Desenvolvimento inicial e crescimento in vitro de Cattleya violaceae (Kunth) Rolfe em diferentes concentrações de sacarose. Acta Amazônica, v. 43(2): 127-134, 2013.

GALDIANO JÚNIOR, R. F.; MANTOVANI, C.; PIVETTA, K. F. L.; LEMOS, E. G. de M. Crescimento in vitro e aclimatização de Cattleya loddigesii Lindley (Orchidaceae) com carvão ativado sob dois espectros luminosos. Ciência Rural, v. 42(5): 801-807, 2012.

HANUS-FAJERSKA, E.; WOJCIECHOWSKA, R. Impact of Light-Emitting Diodes (LEDs) on propagation of orchids in tissue culture. In: Dutta Gupta S. (eds) Light Emitting Diodes for Agriculture. Springer, p.305-320, 2017, https://doi.org/10.1007/978-981-10-5807-3_13.

HUNG, C.; HONG, C.-H.; KIM, S.-K.; LEE, K.-H.; PARK, J.-Y.; NAM, M.-W.; CHOI, D.-H.; LEE, H.-I. LED light for in vitro and ex vitro efficient growth of economically important highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.). Acta Physiologiae Plantarum. 38(6), 2016. https://doi.org/10.1007/s11738-016-2164-0.

JUNQUEIRA, A. H.; PEETZ, M. S. Sustainability in Brazilian floriculture: introductory notes to a systemic approach. Ornamental Horticulture, v. 24(2): 155-162, 2018.

KERBAUY, G. B. Fisiologia vegetal. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, 478p, 2012.

LINO, L. O.; LUZ, J. M. Q.; NAVES, I. V.; RODRIGUES, T. M.; DIAS, L. A.; ARRUDA, A. S. Cinetina, ácido giberélico e BAP na indução de embriões somáticos a partir de anteras de caféeiro Coffea arabica L. Plant Cell Culture & Micropropagation, Lavras, v. 5(2): 111-117, 2009.

MACHADO, A. A.; SILVA, J. G.; SILVEIRA JUNIOR, P.; CONCEIÇÃO, A. R.; Winstat – Sistema de análise estatística para Windows, 1999.

MASSARO, R.; FADIN, D. A.; MORAES, C. P.; VIEIRA, A. S.; MARTELINE, M. A. J. I. S. B. Light quality in vitro growth and acclimatization of two varieties of Phalaenopsis amabilis alba Blume (Orchidaceae). Iheringia, v. 73(2): 208-215. 2018.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiology Plantarum, v. 15: 473-497, 1962.

OSTETTO, S. Orquídeas de Mato Grosso do Sul, 141p, 2015.

RABINOWITCH, E.; GOVINDJEE, G. Photosynthesis. John Wiley and Sons Inc. NY. 273p, 1969.

REED, B. M. Plant cryopreservation: a continuing requirement for food and ecosystem security. In vitro Cellular Developmental Biology – Plant, 53(1): 285-288, 2017.

TEIXEIRA da SILVA, J. A.; HOSSAIN, M. M.; SHARMA, M.; DOBRÁNSZKI, J.; CARDOSO, J. C.; SONGJUN, Z. Acclimatization of in vitro derived Dendrobium. Horticultural Plant Journal, v. 3(3): 110-124, 2017.

THE PLANT LIST. Version 1.1. Publicado na internet; Disponível em: http://www.theplantlist.org/. Acesso em 10 out. 2020.

SANTOS, M. R. A.; FERREIRA, M. G. R.; MARQUES, M. G.; SANTOS, M. R. A. BAP and AIB on in vitro culture of Epidendrum ibaguense Kunth. Plant Cell Cult. Micropropagation. Lavras, v. 6(2): 90-98, 2010.

SORGATO, J. C.; SOARES, J. S.; ROSA, D. B. C. J.; LEME, C. S. R. L.; PEREIRA, S. T. S.; REZENDE, L. S. de R. Imersão em solução nutritiva e ácido giberélico promovem a aclimatização intermediária de Dendrobium phalaenopsis Deang Sure. Revista Brasileira de Biociências. v. 13(3): 176-180, 2015.

VICTÓRIO, C. P.; CRUZ, I. P.; SATO, A.; KUSTE R, R. M.; LAGE, C. L. S. Effects of auxins and cytokinins on in vitro development of Alpinia purpurata K. Schum and phenolic compounds production. Plant Cell Culture & Micropropagation, Lavras, v. 4 (2): 92-98, 2008.

VICTÓRIO, C. P.; LAGE, C. L. S. Efeitos da qualidade de luz na germinação e desenvolvimento inicial in vitro de Phyllanthus tenellus. Revista: Ciência Agronômica, v. 40(3): 400-405, 2009.

VILLA, F.; PASQUAL, M.; FERNANDES da SILVA, E. Micropropagação de híbridos de orquídea em meio Knudson com adição de vitaminas do meio MS, benzilaminopurina e carvão ativado. Semina: Ciências Agrárias, v. 35(2): 683-694, 2014.

WATANABE, D. Orquídeas: manual de cultivo. São Paulo, Associação Orquidófila de São Paulo. 296p, 2002.

Downloads

Publicado

31-12-2020

Como Citar

Ramos, J. C. M., Goelzer, A., & Damiani, C. R. (2020). ESPECTRO LUMINOSO E BAP NA INDUÇÃO DE PLBs A PARTIR DE CALOS DE Cattleya nobilior Rchb.f. (ORCHIDACEAE). Revista Brasileira De Engenharia De Biossistemas, 14(4), 402–411. https://doi.org/10.18011/bioeng2020v14n4p402-411

Edição

Seção

Regular Section