EFFECT OF LUMINOUS SPECTRUM AND BAP ON PLB INDUCTION FROM CALLI OF Cattleya nobilior Rchb.f. (ORCHIDACEAE)

Authors

  • J. C. M. Ramos
  • A. Goelzer
  • C. R. Damiani

DOI:

https://doi.org/10.18011/bioeng2020v14n4p402-411

Keywords:

Orchid, Cytokinin, Protocorms

Abstract

This study was developed with the objective of evaluating the effect of 6-benzylaminopurine - BAP (0; 0.5 and 1.0 mg L-1) and light spectra (white, red and blue), in the induction of structures similar to the protocorms ("protocorm like bodies - PLBs") from calli obtained from leaf explants. The experimental design used was completely randomized and the treatments were arranged in a 3x3 factorial scheme (three concentrations of BAP and three light spectra), with four replicates (flask) containing five explants each. At 60 days of cultivation, the number and length of protocorms, number of leaves per protocorm, total fresh weight, percentage of oxidized explants and color of explants were evaluated, with the latter being assigned the following values: 1 - white / yellowish, 2 - light green and 3 - dark green. From the results obtained it was possible to conclude that the calli cultivation of Cattleya nobilior in MS medium supplemented with 1.0 mg L-1 of BAP and under a red light spectrum promotes an increase in fresh mass and decreases the oxidation of protocorms, while, the culture in medium containing 0.5 mg L-1 of BAP and under white light spectrum promotes a slight increase in the length of the protocorms. However, for the number of protocorms, number of leaves per protocorm and color of the protocorms, the treatments carried out did not promote significant changes on these variables.

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References

ARAÚJO, A.G.; PASQUAL, M.; RODRIGUES, F. A.; RODRIGUES, J. D.; CASTRO, E. M. de; SANTOS, A. M. Crescimento in vitro de Cattleya loddigesii Lindl. em diferentes espectros luminosos associados com ácido giberélico. Ceres, v.56(5): 542-546, 2009.

ARAÚJO, R. Orquídeas brasileiras. São Paulo: Editora Europa, 2016.

BARROS, F.; VINHOS, F.; RODRIGUES, V. T.; BARBERENA, F. F. V. A.; FRAGA, C. N.; PESSOA, E. M.; FORSTER, W.; MENINI NETO, L.; FURTADO, S. G.; NARDY, C.; AZEVEDO, C. O.; GUIMARÃES, L. R. S. Orchidaceae in Lista de Espécies da Flora do Brasil. 2019.

BARROS, F. D. E; Orchidaceae in Flora do Brasil 2020 (em construção). Jardim Botânico do Rio de Janeiro, 2020.

BENZING, D. H.; OTT, D. W.; FRIEDMAN, W. E. Roots of Sobralia macrantha (Orchidaceae): structure and function of the velamen-exodermis complex. American Journal of Botany, v. 1(69): 508-614, 1982.

CAMPOS, R. V.; BIANCHI, V. J.; ROCHA, P. S. G.; SCHUCH, M. W.; FACHINELLO, J. C. BAP na multiplicação in vitro de porta-enxertos de Prunus spp. Plant Cell Culture & Micropropagation, v. 3(2): 55-60, 2007.

CARDOSO, J. C. Publicação em cultivo in vitro de plantas: qualidade para o avanço científico e tecnológico. Horticultura Brasileira, v. 32(4): 383-384, 2014.

ENFLOR. Mercado brasileiro de flores e plantas ornamentais segue na contramão da crise. In: Encontro nacional de floristas, produtores, atacadistas e empresas de acessórios; Holambra, Release econômico; 2019.

ERIG, A. C.; SCHUCH, M. W. Ação da 6-benzilaminopurina e da qualidade da luz na multiplicação in vitro de macieira. Malus domestica Borkh. CVS. Galaxy e Master Gala. Revista Brasileira de Agrociência, v. 12(2), 151-155, 2006.

FARIA, R. T.; ASSIS, A. M.; UNEMOTO, L. K.; CARVALHO, J. F. R. P. Produção de orquídeas em laboratório, Londrina: Mecenas, 124p, 2012.

GALDIANO JÚNIOR, R. F.; MANTOVANI, C.; CASSANO, A. O.; LEMOS, E. M. Desenvolvimento inicial e crescimento in vitro de Cattleya violaceae (Kunth) Rolfe em diferentes concentrações de sacarose. Acta Amazônica, v. 43(2): 127-134, 2013.

GALDIANO JÚNIOR, R. F.; MANTOVANI, C.; PIVETTA, K. F. L.; LEMOS, E. G. de M. Crescimento in vitro e aclimatização de Cattleya loddigesii Lindley (Orchidaceae) com carvão ativado sob dois espectros luminosos. Ciência Rural, v. 42(5): 801-807, 2012.

HANUS-FAJERSKA, E.; WOJCIECHOWSKA, R. Impact of Light-Emitting Diodes (LEDs) on propagation of orchids in tissue culture. In: Dutta Gupta S. (eds) Light Emitting Diodes for Agriculture. Springer, p.305-320, 2017, https://doi.org/10.1007/978-981-10-5807-3_13.

HUNG, C.; HONG, C.-H.; KIM, S.-K.; LEE, K.-H.; PARK, J.-Y.; NAM, M.-W.; CHOI, D.-H.; LEE, H.-I. LED light for in vitro and ex vitro efficient growth of economically important highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.). Acta Physiologiae Plantarum. 38(6), 2016. https://doi.org/10.1007/s11738-016-2164-0.

JUNQUEIRA, A. H.; PEETZ, M. S. Sustainability in Brazilian floriculture: introductory notes to a systemic approach. Ornamental Horticulture, v. 24(2): 155-162, 2018.

KERBAUY, G. B. Fisiologia vegetal. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, 478p, 2012.

LINO, L. O.; LUZ, J. M. Q.; NAVES, I. V.; RODRIGUES, T. M.; DIAS, L. A.; ARRUDA, A. S. Cinetina, ácido giberélico e BAP na indução de embriões somáticos a partir de anteras de caféeiro Coffea arabica L. Plant Cell Culture & Micropropagation, Lavras, v. 5(2): 111-117, 2009.

MACHADO, A. A.; SILVA, J. G.; SILVEIRA JUNIOR, P.; CONCEIÇÃO, A. R.; Winstat – Sistema de análise estatística para Windows, 1999.

MASSARO, R.; FADIN, D. A.; MORAES, C. P.; VIEIRA, A. S.; MARTELINE, M. A. J. I. S. B. Light quality in vitro growth and acclimatization of two varieties of Phalaenopsis amabilis alba Blume (Orchidaceae). Iheringia, v. 73(2): 208-215. 2018.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiology Plantarum, v. 15: 473-497, 1962.

OSTETTO, S. Orquídeas de Mato Grosso do Sul, 141p, 2015.

RABINOWITCH, E.; GOVINDJEE, G. Photosynthesis. John Wiley and Sons Inc. NY. 273p, 1969.

REED, B. M. Plant cryopreservation: a continuing requirement for food and ecosystem security. In vitro Cellular Developmental Biology – Plant, 53(1): 285-288, 2017.

TEIXEIRA da SILVA, J. A.; HOSSAIN, M. M.; SHARMA, M.; DOBRÁNSZKI, J.; CARDOSO, J. C.; SONGJUN, Z. Acclimatization of in vitro derived Dendrobium. Horticultural Plant Journal, v. 3(3): 110-124, 2017.

THE PLANT LIST. Version 1.1. Publicado na internet; Disponível em: http://www.theplantlist.org/. Acesso em 10 out. 2020.

SANTOS, M. R. A.; FERREIRA, M. G. R.; MARQUES, M. G.; SANTOS, M. R. A. BAP and AIB on in vitro culture of Epidendrum ibaguense Kunth. Plant Cell Cult. Micropropagation. Lavras, v. 6(2): 90-98, 2010.

SORGATO, J. C.; SOARES, J. S.; ROSA, D. B. C. J.; LEME, C. S. R. L.; PEREIRA, S. T. S.; REZENDE, L. S. de R. Imersão em solução nutritiva e ácido giberélico promovem a aclimatização intermediária de Dendrobium phalaenopsis Deang Sure. Revista Brasileira de Biociências. v. 13(3): 176-180, 2015.

VICTÓRIO, C. P.; CRUZ, I. P.; SATO, A.; KUSTE R, R. M.; LAGE, C. L. S. Effects of auxins and cytokinins on in vitro development of Alpinia purpurata K. Schum and phenolic compounds production. Plant Cell Culture & Micropropagation, Lavras, v. 4 (2): 92-98, 2008.

VICTÓRIO, C. P.; LAGE, C. L. S. Efeitos da qualidade de luz na germinação e desenvolvimento inicial in vitro de Phyllanthus tenellus. Revista: Ciência Agronômica, v. 40(3): 400-405, 2009.

VILLA, F.; PASQUAL, M.; FERNANDES da SILVA, E. Micropropagação de híbridos de orquídea em meio Knudson com adição de vitaminas do meio MS, benzilaminopurina e carvão ativado. Semina: Ciências Agrárias, v. 35(2): 683-694, 2014.

WATANABE, D. Orquídeas: manual de cultivo. São Paulo, Associação Orquidófila de São Paulo. 296p, 2002.

Published

2020-12-31

How to Cite

Ramos, J. C. M., Goelzer, A., & Damiani, C. R. (2020). EFFECT OF LUMINOUS SPECTRUM AND BAP ON PLB INDUCTION FROM CALLI OF Cattleya nobilior Rchb.f. (ORCHIDACEAE). Revista Brasileira De Engenharia De Biossistemas, 14(4), 402–411. https://doi.org/10.18011/bioeng2020v14n4p402-411

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